##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Гаврюсева Т. В., Сигачева Т. Б., Чеснокова И. И. Патоморфологические и биохимические исследования кефали сингиля Chelon auratus (Risso, 1810) в акватории Юго-Западного Крыма (Чёрное море) // Морской биологический журнал. 2022. Т. 7, № 1. С. 14-33. https://doi.org/10.21072/mbj.2022.07.1.02

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Аннотация

Кефаль сингиль Chelon auratus (Risso, 1810) (Mugilidae) является ценным промысловым видом, занимающим первое место по объёмам вылова среди аборигенных черноморских кефалевых рыб в коммерческом и любительском рыболовстве. Высокая значимость сингиля в региональном промысле демерсальных рыб требует разработки системы оценки состояния здоровья этого вида. Проведение подобного рода исследований включает комплексное применение биохимических и патоморфологических методов, что позволяет изучить изменения, происходящие в организме рыб, до появления видимых проявлений, нарушения процессов роста и размножения, снижения промысловых размеров и сокращения численности популяции. Целью работы было исследовать патоморфологические изменения в сочетании с некоторыми биохимическими показателями тканей кефали сингиля для оценки состояния здоровья рыб. Были проведены визуальный осмотр и патологоанатомическое вскрытие рыб. Для гистологического анализа пробы жабр, печени, почек, желудочно-кишечного тракта, селезёнки и поджелудочной железы были зафиксированы в растворе Дэвидсона и обработаны с использованием стандартных методов. Состояние организма C. auratus на основе гистологических исследований определяли с применением модифицированного полуколичественного анализа альтераций по методике Берне с соавторами и оценки распространённости повреждений в органах согласно балльной системе. Выяснили факторы значимости выявленных повреждений, значения индексов альтерации органов и общий индекс патологии кефалей. При проведении биохимических исследований определяли содержание продуктов окислительной модификации белков, перекисного окисления липидов и мочевины, активность аминотрансфераз и щелочной фосфатазы в печени, концентрацию альбумина и глюкозы в сыворотке крови. В органах кефали сингиля обнаружены гистопатологические изменения четырёх типов (нарушение кровообращения, регрессивные и прогрессивные изменения, воспалительные процессы), а также паразиты. Паразитарные агенты, выявленные у молоди кефали, представлены несколькими видами разных систематических групп (простейшие, моногенеи, трематоды, нематоды). Наиболее тяжёлые гистопатологические изменения были вызваны паразитарным простейшим, предположительно Ichthyophonus sp. При полуколичественной оценке обнаруженных альтераций рыб условно разделили на две группы — условно здоровых и заражённых особей; между ними провели сравнительный анализ патоморфологических данных и некоторых биохимических показателей. Выявлены достоверные различия в значениях индексов альтераций органов между двумя группами C. auratus в почках, печени, желудочно-кишечном тракте и поджелудочной железе. Значения общего индекса патологии рыб также достоверно отличались. При биохимических исследованиях определено достоверное увеличение содержания мочевины в печени рыб из 2-й группы, которое может свидетельствовать о нарушении экскреторной функции почек и жабр (подтверждено гистологически). Значимых отличий содержания продуктов перекисного окисления липидов и окислительной модификации белков, а также активности аминотрансфераз в печени условно здоровых и заражённых рыб не выявлено. Результаты работы подтверждают высокую информативность исследованных показателей для оценки состояния здоровья кефали сингиля.

Авторы

Т. В. Гаврюсева

с. н. с., к. б. н.

https://orcid.org/0000-0002-9102-0861

https://www.elibrary.ru/author_profile.asp?id=292944

Т. Б. Сигачева

с. н. с., к. б. н.

https://orcid.org/0000-0003-3125-898X

https://elibrary.ru/author_items.asp?id=814387

И. И. Чеснокова

с. н. с., к. б. н.

https://orcid.org/0000-0002-7883-0755

https://www.elibrary.ru/author_profile.asp?id=772853

Библиографические ссылки

Болтачёв А. Р., Карпова Е. П. Ихтиофауна прибрежной зоны Севастополя (Чёрное море) // Морской экологический журнал. 2012. Т. 11, № 2. С. 10–27. [Boltachev A. R., Karpova E. P. The ichthyofauna of the Sevastopol coastal zone (the Black Sea). Morskoj ekologicheskij zhurnal, 2012, vol. 11, no. 2, pp. 10–27. (in Russ.)]

Гаврюсева Т. В. Первый случай ихтиофоноза у молоди кижуча Oncorhynchus kisutch (Walbaum) в условиях аквакультуры на Камчатке // Биология моря. 2007. Т. 33, № 1. С. 49–53. [Gavryuseva T. V. The first report of Ichthyophonus hoferi infection in coco salmon Oncorhynchus kisutch juveniles at a fish hatchery in Kamchatka. Russian Journal of Marine Biology, 2007, vol. 33, no. 1, pp. 49–53. (in Russ.)]

Гаевская А. В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях. Севастополь : ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. 237 с. [Gaevskaya A. V. Parasites and Diseases of Marine and Oceanic Fishes in Natural and Culture Conditions. Sevastopol : EKOSI-Gidrofizika, 2004, 237 p. (in Russ.)]

Дмитриева Е. В., Гаевская А. В. Паразитологические аспекты марикультуры и интродукции кефалевых рыб в Азово-Черноморском бассейне // Экология моря. 2001. Вып. 55. С. 73–78. [Dmitrieva E. V., Gaevskaya A. V. Parasitological aspects of mugilids mariculture and of their introduction into the Sea of Azov and the Black Sea. Ekologiya morya, 2001, iss. 55, pp. 73–78. (in Russ.)]

Дмитриева Е. В., Герасев П. И. Моногенеи рода Ligophorus (Ancyrocephalidae) – паразиты черноморских кефалей (Mugilidae) // Паразитология. 1996. Т. 30, № 5. С. 440–449. [Dmitrieva E. V., Gerasev P. I. Monogeneans of the genus Ligophorus (Ancyrocephalidae) – parasites of the Black Sea mullets (Mugilidae). Parazitologiya, 1996, vol. 30, no. 5, pp. 440–449. (in Russ.)]

Дубинина Е. Е., Бурмистов С. О., Ходов Д. А., Поротов И. Г. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека, метод её определения // Вопросы медицинской химии. 1995. Т. 41, вып. 1. С. 24–26. [Dubinina E. E., Burmistrov S. O., Khodov D. A., Porotov I. G. Okislitel’naya modifikatsiya belkov syvorotki krovi cheloveka, metod ee opredeleniya. Voprosy meditsinskoi khimii, 1995, vol. 41, iss. 1, pp. 24–26. (in Russ.)]

Завьялова Е. А., Дрошнев А. Е., Гулюкин М. И., Калинина Н. Р. Анестезия радужной форели // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2012. № 4. С. 22–24. [Zav’yalova E. A., Droshnev A. E., Gulyukin M. I., Kalinina N. R. Anesthesia of the rainbow trout. Rossiiskii veterinarnyi zhurnal. Sel’skokhozyaistvennye zhivotnye, 2012, no. 4, pp. 22–24. (in Russ.)]

Кожурин Е. А., Шляхов В. А., Губанов Е. П. Динамика уловов промысловых рыб Крыма в Чёрном море // Труды ВНИРО. 2018. Т. 171. С. 157–169. [Kozhurin E. A., Shlyakhov V. A., Gubanov E. P. Crimea commercial fish dynamics in the Black Sea. Trudy VNIRO, 2018, vol. 171, pp. 157–169. (in Russ.)]

Корниенко Г. Г., Дудкин С. И., Сергеева С. Г., Ружинская Л. П., Цема Н. И., Бугаев Л. А., Войкина А. В. Физиолого-биохимическая характеристика рыб Азово-Черноморского бассейна в условиях современной антропогенной нагрузки // Вестник Камчатского государственного технического университета. 2017. № 40. С. 58–66. [Kornienko G. G., Dudkin S. I., Sergeeva S. G., Ruzhinskaya L. P., Tsema N. I., Bugaev L. A., Voykina A. V. Physiological and biochemical characteristics of the Azov and Black Sea fishes undergoing anthropogenic pressure. Bulletin of Kamchatka State Technical University, 2018, no. 40, pp. 58–66. (in Russ.)]

Лукина Ю. Н. Проблемы здоровья рыб в водных экосистемах Европейско-Сибирской области Палеарктики : автореф. дис. … д-ра биол. наук : 03.02.08, 03.02.06. Петрозаводск, 2014. 37 с. [Lukina Yu. N. Problemy zdorov’ya ryb v vodnykh ekosistemakh Evropeisko-Sibirskoi oblasti Palearktiki : avtoref. dis. … d-ra biol. nauk : 03.02.08, 03.02.06. Petrozavodsk, 2014, 37 p. (in Russ.)]

Моисеенко Т. И., Гашев С. Н., Селюков А. Г., Жигилева О. Н., Алешина О. А. Биологические методы оценки качества вод: часть 1. Биоиндикация // Вестник Тюменского государственного университета. 2010. № 7. С. 20‒40. [Moiseenko T. I., Gashev S. N., Selyukov A. G., Zhigileva O. N., Aleshina O. A. Biologicheskie metody otsenki kachestva vod: chast’ 1. Bioindikatsiya. Vestnik Tyumenskogo gosudarstvennogo universiteta, 2010, no. 7, pp. 20‒40. (in Russ.)]

Пронькина Н. В., Белофастова И. П. Новые данные о нематодах черноморского сингиля Liza aurata (Pisces: Mugilidae) // Экология моря. 2005. Вып. 68. С. 77–82. [Pronkina N. V., Belofastova I. P. New date about nematodes of the Black Sea golden grey mullet Liza aurata (Pisces: Mugilidae). Ekologiya morya, 2005, iss. 68, pp. 77–82. (in Russ.)]

Стальная И. Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии. Москва : Медицина, 1977. С. 66–68. [Stal’naya I. D., Garishvili T. G. Metod opredeleniya malonovogo dial’degida s pomoshch’yu tiobarbiturovoi kisloty. In: Sovremennye metody v biokhimii. Moscow : Meditsina, 1977, pp. 66–68. (in Russ.)]

Юрахно В. М. Болезни черноморских и азовских рыб, вызываемые миксоспоридиями (Myxozoa: Myxosporea) // Экология моря. 2009. Вып. 77. С. 33–37. [Yurakhno V. M. The Black Sea and the Sea of Azov fish diseases induced by myxosporeans (Myxozoa: Myxosporea). Ekologiya morya, 2009, iss. 77, pp. 33–37. (in Russ.)]

Au D. W. T. The application of histo-cytopathological biomarkers in marine pollution monitoring: A review. Marine Pollution Bulletin, 2004, vol. 48, iss. 9–10, pp. 817–834. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2004.02.032

Banaee M., Sureda A., Mirvaghefi A. R., Ahmadi K. Effects of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide Biochemistry and Physiology, 2012, vol. 99, iss. 1, pp. 1–6. http://dx.doi.org/10.1016/j.pestbp.2010.09.001

Banaee M., Sureda A., Zohiery F., Nematdoust Hagi B., Garanzini D. S. Alterations in biochemical parameters of the freshwater fish, Alburnus mossulensis, exposed to sub-lethal concentrations of fenpropathrin. International Journal of Aquatic Biology, 2014, vol. 2, no. 2, pp. 58–68. https://doi.org/10.22034/IJAB.V2I2.32

Bancroft D., Stevens A., Turner D. R. Theory and Practice of Histological Techniques. Edinburgh ; London ; Melbourne ; New York : Churchill Livingstone Inc., 1990, 725 p.

Bernet D., Schmidt H., Meier W., Burkhard-Holm P., Wahli T. Histopathology in fish: Proposal for protocol to assess aquatic pollution. Journal of Fish Diseases, 1999, vol. 22, iss. 1, pp. 25–34. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1999.00134.x

Bruno D. W., Novak B., Elliott D. G. Guide to the identification of fish protozoan and metazoan parasites in stained tissue sections. Diseases of Aquatic Organisms, 2006, vol. 70, no. 1–2, pp. 1–36. https://doi.org/10.3354/dao070001

Costa P. M., Diniz M. S., Caeiro S., Lobo J., Martins M., Ferreira A. M., Caetano M., Vale C., DelValls T. Á., Costa M. H. Histological biomarkers in liver and gills of juvenile Solea senegalensis exposed to contaminated estuarine sediments: A weighted indices approach. Aquatic Toxicology, 2009, vol. 92, iss. 3, pp. 202–212. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2008.12.009

Frasca S. Jr., Wolf J. C., Kinsel M. J., Camus A. C., Lombardini E. D. 39. Osteichthyes (freshwater & marine). In: Pathology of Wildlife and Zoo Animals / K. A. Terio, D. McAloose, J. St. Leger (Eds). London ; San Diego ; Cambridge ; Oxford : Academic Press : Elsevier Inc., 2018, pp. 953–1001. https://doi.org/10.1016/C2015-0-01586-6

Feist S. W., Stentiford G. D., Kent M. L., Santos A. R., Lorance P. Histopathological assessment of liver and gonad pathology in continental slope fish from the northeast Atlantic Ocean. Marine Environmental Research, 2015, vol. 106, pp. 42–50. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2015.02.004

Floyd-Rump T. P., Horstmann-Dehn L. A., Atkinson S., Skaugstad C. Effect of Ichthyophonus on blood plasma chemistry spawning Chinook salmon and their resulting offspring in a Yukon River tributary. Diseases of Aquatic Organisms, 2017, vol. 122, no. 3, pp. 223–236. https://doi.org/10.3354/dao03077

ICES. Report of the Working Group on Pathology and Diseases of Marine Organisms (WGPDMO), 24–28 February, 2015, Helsinki, Finland, 2015. Copenhagen : ICES, 2015, 124 p. (ICES CM 2015/SSGEPI:01). https://doi.org/10.17895/ices.pub.8495

Kavitha C., Malarvizhi A., Senthil Kumaran S., Ramesh M. Toxicological effects of arsenate exposure on hematological, biochemical and liver transaminases activity in an Indian major carp, Catla catla. Food and Chemical Toxicology, 2010, vol. 48, iss. 10, pp. 2848–2854. http://dx.doi.org/10.1016/j.fct.2010.07.017

Kole D., Pal S., Mukherjee A. K., Samanta P., Ghosh A. R. Effects of chromium on tissue-specific biochemical parameters in freshwater catfish, Anabas testudineus (Bloch). In: HydroMedit 2014 : 1st International Congress of Applied Ichthyology & Aquatic Environment, 13–15 Nov., Volos, Greece : [proceedings]. [Nea-Ionia], 2014, pp. 168–174.

Kundu I., Bandyopadhyay P. K., Mandal D. R., Gürelli G. Study of pathophysiological effects of the nematode parasite Eustrongylides sp. on freshwater fish Channa punctatus by hematology, serum biochemical, and histological studies. Türkiye Parazitoloji Derneği, 2016, vol. 40, iss. 1, pp. 42–47. https://doi.org/10.5152/tpd.2016.4551

Kurhalyuk N., Tkachenko H. Induction of oxidative stress and antioxidant defenses in the livers of sea trout, Salmo trutta L., with ulcerative dermal necrosis. Archives of Polish Fisheries, 2011, vol. 19, fasc. 4, pp. 229–240.

Marcogliese D. J., Brambilla L. G., Gagne F., Gendron A. D. Joint effects of parasitism and pollution on oxidative stress biomarkers in yellow perch Perca flavescens. Diseases of Aquatic Organisms, 2005, vol. 63, pp. 77–84. https://doi.org/10.3354/dao063077

Nnabuchi U. O., Ejikeme O. G., Didiugwu N. C., Ncha O. S., Onahs S. P., Amarachi A. C. Effect of parasites on the biochemical and haematological indices of some clariid (Siluriformes) catfishes from Anambra River, Nigeria. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 2015, vol. 3, iss. 2, pt. E, pp. 331–336.

Noga E. J. Fish Disease: Diagnosis and Treatment. 2nd edition. Ames, Iowa : Wiley-Blackwell, 2010, 519 p.

Noor El-Deen A. E., Mona M. Ismaiel, Mohamed A. E., Omima A. A. El-Ghany. Comparative studies on the impact of humic acid and formalin on ectoparasitic infestation in Nile tilapia Oreochromis niloticus. Nature and Science, 2010, vol. 8, no. 2, pp. 121–125. https://doi.org/10.7537/marsnsj080210.16

Osman H. A. M., Fadel N. G., Ali A. T. Biochemical and histopathological alterations in catfish, Clarias gariepinus, infected with trypanosomiasis with special reference to immunization. Egyptian Journal of Comparative Pathology and Clinical Pathology, 2009, vol. 22, no. 3, pp. 164–181.

Osman H. A. M., El-Refaey A. M. E., Rahman A., Al-Zahrani Q., Hazzaa M. S. Field studies on ichthyophonasis (ichthyosporidiosis) infecting Red Sea cultured grouper, taradi, Plectropomus areolatus in Jeddah, Saudi Arabia with a special trial for treatment using Moringa oleifera. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 2015, vol. 6, no. 4, pp. 2207–2217.

Ovcharenko M. O. Microparasites of worldwide mullets. Annals of Parasitology, 2015, vol. 61, no. 4, pp. 229–239. https://doi.org/10.17420/ap6104.12

Saleh Y. S., Marie M.-A. S. Use of Arius thalassinus fish in a pollution biomonitoring study, applying combined oxidative stress, hematology, biochemical and histopathological biomarkers: A baseline field study. Marine Pollution Bulletin, 2016, vol. 106, iss. 1–2, pp. 308–322. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2016.03.030

Santos D. M. S., Melo M. R. S., Mendes D. C. S., Rocha I. K. B. S., Silva J. P. L., Cantanhêde S. M., Meletti P. C. Histological changes in gills of two fish species as indicators of water quality in Jansen Lagoon (São Luís, Maranhão State, Brazil). International Journal of Environmental Research and Public Health, 2014, vol. 11, no. 12, pp. 12927–12937. https://doi.org/10.3390/ijerph111212927

Saraiva A., Costa J., Serrão J., Cruz C., Eiras J. C. A histology-based fish health assessment of farmed seabass (Dicentrarchus labrax L.). Aquaculture, 2015, vol. 448, pp. 375–381. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.06.028

Stentiford G. D., Bignell J. P., Lyons B. P., Feist S. W. Site-specific disease profiles in fish and their use in environmental monitoring. Marine Ecology Progress Series, 2009, vol. 381, pp. 1–15. https://doi.org/10.3354/meps07947

Öztürk T. Parasites of juvenile golden grey mullet Liza aurata Risso, 1810 in Sarıkum Lagoon Lake at Sinop, Turkey. Acta Parasitologica, 2013, vol. 58, iss. 4, pp. 531–540. https://doi.org/10.2478/s11686-013-0173-3

Yurakhno V. M., Ovcharenko M. O. Study of Myxosporea (Myxozoa), infecting worldwide mullets with description of a new species. Parasitological Research, 2014, vol. 113, pp. 3661–3674. https://doi.org/10.1007/s00436-014-4031-5

Финансирование

Работа выполнена в рамках государственного задания ФИЦ ИнБЮМ по темам «Закономерности формирования и антропогенная трансформация биоразнообразия и биоресурсов Азово-Черноморского бассейна и других районов Мирового океана» (№ гос. регистрации 121030100028-0) и «Функциональные, метаболические и токсикологические аспекты существования гидробионтов и их популяций в биотопах с различным физико-химическим режимом» (№ гос. регистрации 121041400077-1).

Статистика

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.