Рост Isochrysis galbana Parke, 1949 (Haptophyta) в миксотрофных условиях с использованием салициловой кислоты
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Google Scholar
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Аннотация
Проведена оценка влияния различных концентраций салициловой кислоты на динамику роста Isochrysis galbana Parke, 1949 в накопительной культуре. Культивирование осуществляли в монокультуре. Прирост биомассы водорослей находили по увеличению числа клеток, просчитанных в каждом опыте в камере Горяева в трёх повторностях под световым микроскопом. Продолжительность экспериментов составляла 7 суток. Установлено, что концентрации салициловой кислоты от 2,8 × 10−7 до 5,6 × 10−7 моль·л−1 оказывали стимулирующее воздействие на динамику роста клеток I. galbana по сравнению с контрольной группой. Максимальный прирост клеток в культуре отмечен при добавлении салициловой кислоты в концентрации 2,8 × 10−7 моль·л−1, причём удельная скорость роста при данной концентрации на 7-е сутки эксперимента была в 1,2 раза выше, чем в контрольной группе. Проведена оценка биохимических показателей культуры водорослей I. galbana с добавлением салициловой кислоты в концентрации 2,8 × 10−7 моль·л−1 в течение 7 суток эксперимента в сравнении с показателями контрольной группы. Максимальное содержание белка в экспериментальной группе зарегистрировано на 7-е сутки опыта. Увеличение составляло 76,9 % по сравнению с начальным значением. Показано, что максимальный рост содержания липидов и углеводов в экспериментальной группе приходился на 5-е сутки опыта. Прирост значений по этим показателям составлял 41,7 и 87 % соответственно. Содержание хлорофилла росло на протяжении всего времени опыта как в контрольной, так и в экспериментальной группе, при этом наибольшее значение показателя отмечено для экспериментальной группы.
Авторы
Библиографические ссылки
Ковалев Н. Н., Лескова С. Е., Михеев Е. В., Позднякова Ю. М., Есипенко Р. В. Влияние салициловой кислоты на продукционные характеристики и биохимические показатели Tetraselmis suecica в накопительной культуре // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2021. № 1. С. 90–99. [Kovalev N. N., Leskova S. E., Mikheev E. V., Pozdnyakova Yu. M., Esipenko R. V. Influence of salicylic acid on production characteristics and biochemical parameters of Tetraselmis suecica in enrichment culture. Vestnik Astrakhanskogo gosudarstvennogo tekhnicheskogo universiteta. Seriya: Rybnoe khozyaistvo, 2021, no. 1, pp. 90–99. (in Russ.)]. https://doi.org/10.24143/2073-5529-2021-1-90-99
Романенко Е. А., Косаковская И. В., Романенко П. А. Фитогормоны микроводорослей: биологическая роль и участие в регуляции физиологических процессов. Ч. II. Цитокинины и гиббереллины // Альгология. 2016. Т. 26, № 2. С. 203–229. [Romanenko E. A., Kosakovskaya I. V., Romanenko P. A. Phytohormones of microalgae: Biological role and involvement in the regulation of physiological processes. Pt. II. Cytokinins and gibberellins. Algologiya, 2016, vol. 26, no. 2, pp. 203–229. (in Russ.)]. https://doi.org/10.1615/InterJAlgae.v18.i2.70
Табельская А. С., Калинина М. В. Рост и выживаемость заводских личинок тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas при различных концентрациях микроводорослей и солёности в условиях южного Приморья // Известия ТИНРО. 2021. Т. 201, № 3. С. 723–731. [Tabelskaya A. S., Kalinina M. V. Growth and survival of the hatchery larvae of Pacific oyster Crassostrea gigas under different concentrations of microalgae and salinity in conditions of southern Primorye. Izvestiya TINRO, 2021, vol. 201, no. 3, pp. 723–731. (in Russ.)]. https://doi.org/10.26428/1606-9919-2021-201-723-734
Тренкешу Р. П., Лелеков А. С. Моделирование роста микроводорослей в культуре. Белгород : Константа, 2017. 152 с. [Trenkenshu R. P., Lelekov A. S. Modeling Growth of Microalgae in Culture. Belgorod : Constanta, 2017, 152 p. (in Russ.)]. URL: https://repository.marine-research.ru/handle/299011/2073
Alkhamis Y., Qin J. G. Cultivation of Isochrysis galbana in phototrophic, heterotrophic, and mixotrophic conditions. BioMed Research International, 2013, vol. 2013, art. no. 983465 (9 p). https://doi.org/10.1155/2013/983465
Aminot A., Ray F. Standard Procedure for the Determination of Chlorophyll a by Spectroscopic Methods. Copenhagen, Denmark : International Council for the Exploration of the Sea, 2000, 17 p. (ICES Techniques in Marine Environmental Sciences).
Cañavate J.-P., Hachero-Cruzado I., Pérez-Gavilán C., Fernández-Díaz C. Lipid dynamics and nutritional value of the estuarine strain Isochrysis galbana VLP grown from hypo to hyper salinity. Journal of Applied Phycology, 2020, vol. 32, iss. 6, pp. 3749–3766. https://doi.org/10.1007/s10811-020-02258-2
Carneiro M., Pôjo V., Malcata F. X., Otero A. Lipid accumulation in selected Tetraselmis strains. Journal of Applied Phycology, 2019, vol. 31, iss. 5, pp. 2845–2853. https://doi.org/10.1007/s10811-019-01807-8
Danesh A., Zilouei H., Farhadian O. The effect of glycerol and carbonate on the growth and lipid production of Isochrysis galbana under different cultivation modes. Journal of Applied Phycology, 2019, vol. 31, iss. 6, pp. 3411–3420. https://doi.org/10.1007/s10811-019-01888-5
Guillard R. R. L. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In: Culture of Marine Invertebrate Animals / M. L. Smith, M. H. Chanley (Eds). New York ; London : Plenum Press, 1975, pp. 29–60. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-8714-9_3
Herbert D., Phipps P. J., Strange R. E. Chemical analysis of microbial cells. In: Methods in Microbiology / J. R. Norris, D. W. Ribbons (Eds). London ; New York : Academic Press, 1971, vol. 5, pt. B, chap. 3, pp. 209–344. http://dx.doi.org/10.1016/S0580-9517(08)70641-X
Johnson K. R., Ellis G., Toothill C. The sulfophosphovanillin reaction for serum lipids: A reappraisal. Clinical Chemistry, 1977, vol. 23, iss. 9, pp. 1669–1678. https://doi.org/10.1093/CLINCHEM%2F23.9.1669
Laurens L. M. L., Dempster T. A., Jones H. D. T., Wolfrum E. J., Van Wychen S., McAllister J. S. P., Rencenberger M., Parchert K. J., Gloe L. M. Algal biomass constituent analysis: Method uncertainties and investigation of the underlying measuring chemistries. Analytical Chemistry, 2012, vol. 84, iss. 4, pp. 1879–1887. https://doi.org/10.1021/ac202668c
Lowry O. H., Rosebrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 1951, vol. 193, iss. 1, pp. 265–275. http://doi.org/10.1016/s0021-9258(19)52451-6
Madani N. S. H., Hosseini Shekarabi S. P., Mehrgan M. S., Pourang N. Can 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid alter growth performance, biochemical composition, and fatty acid profile of the marine microalga Isochrysis galbana? Phycologia, 2020, vol. 59, iss. 6, pp. 598–605. https://doi.org/10.1080/00318884.2020.1827826
Madani N. S. H., Shamsaie Mehrgan M., Hosseini Shekarabi S. P., Pourang N. Regulatory effect of gibberellic acid (GA3) on the biomass productivity and some metabolites of a marine microalga, Isochrysis galbana. Journal of Applied Phycology, 2021, vol. 33, iss. 1, pp. 255–262. https://doi.org/10.1007/s10811-020-02291-1
Priyadarshani I., Rath B. Commercial and industrial applications of microalgae – A review. Journal of Algal Biomass Utilization, 2012, vol. 3, no. 4, pp. 89–100.
Sánchez Á., Maceiras R., Cancela Á., Pérez A. Culture aspects of Isochrysis galbana for biodiesel production. Applied Energy, 2013, vol. 101, pp. 192–197. https://doi.org/10.1016/j.apenergy.2012.03.027
Shields R. J., Lupatsch I. Algae for aquaculture and animal feeds. Technikfolgenabschätzung – Theorie und Praxis, 2012, vol. 21, no. 1, pp. 23–37.
Tzovenis I., De Pauw N., Sorgeloos P. Effect of different light regimes on the docosahexaenoic acid (DHA) content of Isochrysis aff. galbana (clone T-ISO). Aquaculture International, 1997, vol. 5, iss. 6, pp. 489–507. https://doi.org/10.1023/A:1018349131522
Valenzuela-Espinoza E., Millán-Núñez R., Núñez-Cebrero F. Protein, carbohydrate, lipid and chlorophyll a content in Isochrysis aff. galbana (clone T-Iso) cultured with a low cost alternative to the f/2 medium. Aquacultural Engineering, 2002, vol. 25, iss. 4, pp. 207–216. https://doi.org/10.1016/S0144-8609(01)00084-X
Van Bergeijk S. A., Salas-Leiton E., Cañavate J. P. Production of Isochrysis aff. galbana (T-Iso) in outdoor tubular photobioreactors. 7th European Workshop “Biotechnology of Microalgae”, June 11–13, 2007, Nuthetal, Germany. [S. l.] : [S. n.], 2007, pp. 68–72.
