Рост криптофитовой микроводоросли Rhodomonas salina (Wislouch) D. R. A. Hill & R. Wetherbee, 1989 при разных условиях культивирования
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Google Scholar
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Аннотация
Исследовано влияние температуры и освещённости на удельную скорость роста и на накопление биомассы криптофитовой микроводоросли Rhodomonas salina; определены оптимальные условия её культивирования для получения максимальной биомассы. R. salina культивировали на питательной среде Конвея (в собственной модификации) при температуре (20 ± 1), (24 ± 1) и (28 ± 1) °C и освещённости 13, 67, 135 и 202 μмоль квантов·м−2·с−1. Показано, что увеличение температуры до значений выше оптимальных приводит к снижению скорости роста и биомассы микроводоросли. Существенных различий в показателях роста R. salina при освещённости 135 и 202 μмоль квантов·м−2·с−1 (значения μ — (0,69 ± 0,04) и (0,64 ± 0,02) сут−1 соответственно) не зарегистрировано. Рост микроводоросли замедлялся при низкой освещённости (13 μмоль квантов·м−2·с−1) (значение μ — (0,33 ± 0,03) сут−1). Максимальная биомасса [(3,74 ± 0,28) г·л−1] получена при оптимальной температуре [(24 ± 1) °C] и освещённости 135 μмоль квантов·м−2·с−1. При оптимальных условиях культивирования максимальное накопление белка отмечено в экспоненциальной фазе роста (29 %), а липидов — в стационарной фазе (41 %).
Авторы
Библиографические ссылки
Ладыгина Л. В. Микроводоросль Rhodomonas salina – перспективный кормовой объект в аквакультуре моллюсков // Экология моря. 2010. Вып. 81. С. 50–53. [Ladygina L. V. Microalga Rhodomonas salina is a promising food object in mollusc aquaculture. Ekologiya morya, 2010, iss. 81, pp. 50–53. (in Russ.)]
Лакин Г. Ф. Биометрия : учебное пособие для биол. спец. вузов. Москва : Высшая школа, 1990. 352 с. [Lakin G. F. Biometriya : uchebnoe posobiye dlya biol. spets. vuzov. Moscow : Vysshaya shkola, 1990, 352 p. (in Russ.)]
Методы гидрохимических исследований основных биогенных элементов. Москва : ВНИРО, 1988. 150 с. [Metody gidrokhimicheskikh issledovanii osnovnykh biogennykh elementov. Moscow : VNIRO, 1988, 150 p. (in Russ.)]
Холодов В. И., Пиркова А. В., Ладыгина Л. В. Выращивание мидий и устриц в Чёрном море. 2-е издание, дополненное. Воронеж : Издат-Принт, 2017. 508 с. [Kholodov V. I., Pirkova A. V., Ladygina L. V. Cultivation of Mussels and Oysters in the Black Sea. 2nd ed., suppl. Voronezh : Izdat-Print, 2017, 508 p. (in Russ.)]
Bartua A., Lubián L. M., Gálvez J. A., Niell F. X. Effect of irradiance on growth, photosynthesis, pigment content and nutrient consumption in dense cultures of Rhodomonas salina (Wislouch) (Cryptophyceae). Ciencias Marina, 2002, vol. 28, no. 4, pp. 381–392. https://doi.org/10.7773/cm.v28i4.236
Brown M. R., Jeffrey S. W., Volkman J. K., Dunstan G. A. Nutritional properties of microalgae for mariculture. Aquaculture, 1997, vol. 15, iss. 1–4, pp. 315–331. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(96)01501-3
Chaloub R. M., Motta N. M. S., Araujo S. P., Aguiar P. F., Silva A. F. Combined effects of irradiance, temperature and nitrate concentration on phycoerythrin content in the microalga Rhodomonas salina sp. (Cryptophyceae). Algal Research, 2015, vol. 8, pp. 89–94. https://doi.org/10.1016/j.algal.2015.01.008
Fernández-Reiriz M. J., Pérez-Camacho A., Ferreiro M. J., Blanco J., Planas M., Campos J. M., Labarta U. Biomass production and variation on the biochemical profile (total protein, carbohydrates, RNA, lipids and fatty acids) of seven species of marine microalgae. Aquaculture, 1989, vol. 83, iss. 1–2, pp. 17–38. https://doi.org/10.1016/0044-8486(89)90057-4
Guevara M., Arredondo-Vega B. O., Palacios Y., Saez K., Comez P. I. Comparison of growth and biochemical parameters of two strains of Rhodomonas salina (Cryptophyceae) cultivated under different combinations of irradiance, temperature and nutrients. Journal of Applied Physiology, 2016, vol. 28, no. 5, pp. 2651–2660. https://doi.org/10.1007/s10811-016-0835-2
Lowry O. H., Rosebrough N. J., Faar A. L. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 1951, vol. 193, iss. 1, pp. 265–275. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)52451-6
Rowan K. S. Photosynthetic Pigment of Algae. New York : Cambridge University Press, 1989, 334 p.
Silva A. F., Lourenço S. O., Chaloub R. M. Effects of nitrogen starvation on the photosynthetic physiology of a tropical marine microalga Rhodomonas sp. (Cryptophyceae). Aquatic Botany, 2009, vol. 91, iss. 4, pp. 291–297. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2009.08.001
Vu M. T. T., Douëtte C., Rayner T. A., Vinum T. C., Nielsen S. L., Winding H. B. Optimization of photosynthesis, growth, and biochemical composition of the microalga Rhodomonas salina – An established diet for live feed
copepods in aquaculture. Journal of Applied Physiology, 2016, vol. 28, no. 3, pp. 1485–1500. https://doi.org/10.1007/s10811-015-0722-2
Tremblay R., Cartier S., Miner P., Pernet F., Quéré C., Moal J., Muzellec M., Mazuret M., Samain J. Effect of Rhodomonas salina addition to a standard hatchery diet during the early ontogeny of the scallop Pecten maximus. Aquaculture, 2007, vol. 262, no. 2–4, pp. 410–418. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.10.009
Videla J. A., Chaparro O. R., Thompson R. J., Concha I. I. Role of biochemical energy reserves in the metamorphosis and early juvenile development of the oyster Ostrea chilensis. Marine Biology, 1998, vol. 32, pp. 635–640. https://doi.org/10.1007/s002270050428
Vonshak A. Laboratory techniques for the cultivation of microalgae. In: Handbook of Microalgae Mass Culture / A. Richmond (Ed.). Boca Raton, Florida : CRC Press, 1986, pp. 117–146. https://doi.org/10.1201/9780203712405
Whyte J. S., Bourne N., Hodgson C. A. Influence of algal diets on biochemical composition and energy reserves in Patinopecten yessoensis (Jay) larvae. Aquaculture, 1989, vol. 78, iss. 3–4, pp. 333–347. https://doi.org/10.1016/0044-8486(89)90110-5
Zhang J., Wu C., Pellegrini D., Romano G., Esposito F., Ianora A. Effects of different monoalgal diets on egg production, hatching success and apoptosis induction in a Mediterranean population of the calanoid copepod Acartia tonsa (Dana). Aquaculture, 2013, vol. 400–401, pp. 65–72. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.02.032
